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1.基于二维液相色谱串联质谱平台定性鉴定草莓柱头蛋白的方法,其特征是依次包括以下步骤:1)、样品准备和提取纯化;将小蕾期、中蕾期、大蕾期的草莓柱头按照1:1:1的数量混合后作为样品,经提取纯化,得蛋白粉;2)、蛋白定量和还原烷基化;取裂解液溶解蛋白粉,得蛋白溶液;取含200μg蛋白的蛋白溶液,加入100mM NH4HCO3溶液定容至100μL,再加入11μL 100mM的DTT溶液,混匀后放于37±1℃反应1±0.1h;加入12μL 500mM的IAM溶液,避光室温反应30±2min;3)、蛋白酶解;将步骤2)所得的反应液进行超滤除杂,然后加入100mM NH4HCO3至总体积为100μL,加入4μg Trypsin,于37±1℃反应12~16h,从而实现酶解;上述酶解完成后离心,在离心所得沉淀中加入100mM NH4HCO3 100μL后重复离心一次,合并两次离心所得液,即得肽段溶液;所述离心均为4±1℃12000±2000rpm离心15±2min;肽段溶液中加入5%(V/V)TFA水溶液至TFA终浓度为0.1~1%(V/V),除盐后冻干,得冻干粉;4)、第一维SCX强阳离子交换液相色谱分离肽段混合物;SCX Buffer A:10mMKH2PO4,25%乙腈,pH 2.9;SCX Buffer B:10mM KH2PO4,400mM KCl,25%乙腈,pH 2.9;步骤3)所得的全部冻干粉用SCX Buffer A复溶,经BioBasic SCX柱梯度分离;分离梯度为:0~5min,0%SCX Buffer B;5~8min,0%~3%SCX Buffer B;8~50min,3%~40%SCX Buffer B;50~60min,40~100%SCX Buffer B;60~65min,100%SCX Buffer B;65‑70min,100~0%SCX buffer B;上述每个时间段的流动相的余量为SCX Buffer A;每个时间段内,SCX Buffer B的浓度均匀进行改变;洗脱流速为1ml/min;收集含有肽段的洗脱组分;除盐后冻干,得到肽段粉末;5)、第二维反向C18液相分离串联Q Exactive质谱分析;C18 Buffer A:0.1%甲酸水溶液;C18 Buffer B:0.1%甲酸乙腈溶液;步骤4)所得的肽段粉末进行以下的质谱分析:用C18 Buffer A复溶,经AcclaimTMPepMapTM100 C18液相色谱柱梯度在线分离后进Q Exactive质谱仪分析;分离梯度:0~3min,4~7%C18 Buffer B;3~103min,7~18%C18 Buffer B;103~113min,18~35%C18 Buffer B;113~117min,35~75%C18 Buffer B,117~120min,75%C18 Buffer B;上述每个时间段的流动相的余量为C18 Buffer A;每个时间段内,C18 Buffer B的浓度均匀进行改变;洗脱流速为1ml/min;6)、数据分析:质谱仪得到的原始文件经Maxquant搜库鉴定,从而获得蛋白和肽段信息列表。 |